CRISPRCas9系统介导的斑马鱼SLC29A3基因的定点敲除文献综述

 2022-08-07 09:08

基因编辑技术在基因敲除研究中的应用

摘要:基因编辑技术是生命科学研究的重要内容,本文对CRISPR/Cas9、CRISPR/Cpf1、NgAgo、SGN几种新型基因编辑技术从构成,适用范围以及优缺点作了简单的介绍。CRISPR/Cas9系统展现出很强的基因编辑能力,是一项极具有应用潜质的新技术。因此着重论述了CRISPR/Cas9在植物、动物、细菌基因敲除研究中的应用,对该技术的影响因素以及可行性进行了分析,旨在为生命科学研究领域研究人员提供参考。

关键词:基因编辑技术; CRISPR/Cas9应用; 基因敲除

文献综述

基因编辑技术是在基因组水平进行基因定点插入或缺失突变、敲除、多位点同时突变和小片段删除等精确操作的技术,是生命科学领域的重要研究内容,但在对生物基因组进行定向修饰时,该技术的打靶效率低,试验周期长,应用范围窄使对生命科学的研究受到了阻碍。随着基因编辑技术的不断发展,新型基因编辑技术通过特异识别并且裂解靶DNA双链,激发细胞内源性修复机制实现基因定向改造,提高了打靶效率,且构建成本低,应用范围广,促进了生命科学的研究进程[1]。基因敲除又叫做基因打靶,是从分子水平去除或替代一个基因,通过观察实验动物的表型,以此推测该基因的功能。利用基因敲除建立的疾病模型,通过研究动物发育过程中各个基因的功能,成为研究治疗遗传疾病的途径[2]

基因编辑技术研究进展

CRISPR/Cas9

CRISPR/Cas9也叫作RNA导向打靶系统,能够完成RNA导向的DNA识别以及编辑,提供了更高效的基因定点修饰技术平台。 CRISPR/Cas9由tracrRNA、crRNA与Cas9蛋白酶三部分组成, 需要tracrRNA序列与crRNA结合成复合物发挥识别作用。其作为一项新型基因编辑技术,已经在细胞水平和个体水平上得到了广泛的应用,尤其在各种重要的模式生物(如线虫,果蝇,斑马鱼,小鼠,大鼠, 猴子等),显示出了强大的基因编辑能力。但是,由于在设计sgRNA时受到特异性位点的限制和某些物种复杂的基因结构,该技术还面临着脱靶效应、细胞毒性、基因插入困难等问题,在一定程度上限制了CRISPR/Cas9技术的应用[3]

CRISPR/Cpf1

Cpf1是一种新型CRISPR效应蛋白,与Cas9相比,具有许多不同的特性,有利于克服CRISPR/Cas9应用中的一些限制。Cpf1蛋白酶被发现可以编辑靶基因, 且序列更简单、高效最重要的是脱靶效应几乎没有,效率获得了突破性的提高。 CRISPR/Cpf1由crRNA与Cpf1蛋白酶两部分构成, 不需要tracrRNA序列,通过减小gRNA的序列,减轻了针对靶序列的gRNA的设计工作, 而且在一定程度上提高了该系统的转染效率。Cpf1酶分子量小,更容易进入细胞,可以提高编辑成功率。该系统切割靶位点产生的黏性末端, 引起较大基因片段的缺失与插入, 这在一定程度上增加了编辑靶序 列的可塑性[4]

NgAgo

NgAgo 技术一种新的基因编辑工具。NgAgo是一种耐热古细菌的 Argonaute( Ago) 蛋白的简称。 Ago 同源蛋白具有核酸酶活性,可以在RNA或DNA的引导下,切割外来的基因或质粒。但因为只能在高温下工作,该系统不能应用于一般生物细胞的研究。 经过多次实验证明NgAgo不能进行基因组编辑,但能在DNA 引导下,作为核酸内切酶切割RNA被认为可能是一个很方便的基因敲降工具[5]。经研究发现,NgAgo 技术 gDNA 设计方便,编辑对象所受限制小,几乎能编辑基因组内任何位置,同时编辑精准度较高。但目前NgAgo 技术还存在无法使用质粒或慢性病毒载体输送gDNA且gDNA不能再改造等问题,还需要后续工作进行进一步的改进[6]

SGN

结构引导的核酸内切酶(SGN)是由Xu等创新性的把翘尾核酸内切酶1(FEN-1)与 TALEN 中使用的FokI的切割结构域(Fn1)结合成为该种重组核酸内切酶。SGN通过一个向导 DNA( gDNA)与目标DNA配对,可以识别gDNA的翘尾结构,并对 DNA双链进行切割,因此SGN及gDNA 需要成对使用。经过对斑马鱼基因编辑的研究发现该技术的编辑效率较低,且编辑去除的序列长度不受控制,因此作为一种基因编辑工具,其并不受到广泛的信赖。因此,该技术还需要进一步的研究和完善,提高其可控性才能广泛应用于生物学研究领域[5]

CRISPR/Cas9系统介导的基因敲除研究

CRISPR/Cas9系统在介导基因敲除研究中的应用

在CRISPR/Cas9基因编辑技术取得进展之后,其迅速被应用于人类、大鼠、小鼠、斑马鱼等模式动物的基因编辑研究中。哈佛医学院的P.Mali等[7]利用CRISPR/Cas9系统成功对人类诱导多潜能干细胞的AAVS1位点进行打靶。在斑马鱼中,H.Wang 等人分别构建了针对 fh 基因的sgRNA和编码Cas9的T7启动子表达载体,通过显微注射的方式成功在斑马鱼胚胎中实现了特定 DNA 位点的切割,且研究了其功能。W.Li[8]利用CRISPR/Cas9技术,首次在大鼠上实现了多基因同步敲除。D.Li 等[9],也利用CRISPR/Cas9技术获得了基因敲除大鼠。

CRISPR/Cas9系统在拟南芥,烟草,水稻,玉米,高粱,大麦,甜橙和番茄等多个植物物种中可以进行高效的基因编辑。经研究发现,CRISPR/Cas9系统利用农杆菌侵染方法稳定转化拟南芥和水稻,突变效率有所提高,表明了该系统可以有效地诱导水稻中目标基因的编辑,而且利用CRISPR/Cas9系统可在水稻原生质体实现染色体大片段的删除[10]

CRISPR/Cas9系统还可以对肺炎双球菌,大肠埃希菌以及链霉菌属的多个菌种进行 基因编辑。研究表明CRISPR/Cas9系统有可能在构建新一代工程菌的过程中起到关键作 用,但是细菌很难修复 CRISPR造成的损伤[11]

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